Чисто масло Saposhnikovia divaricata за производство на свещи и сапуни етерично масло за дифузери на едро ново за дифузери за тръстикова горелка
кратко описание:
2.1. Подготовка на SDE
Коренищата на SD бяха закупени като изсушена билка от Hanherb Co. (Guri, Корея). Растителните материали са потвърдени таксономично от д-р Go-Ya Choi от Корейския институт по източна медицина (KIOM). Образец от ваучер (номер 2014 SDE-6) беше депозиран в Корейския хербариум на стандартните билкови ресурси. Изсушени коренища на SD (320 g) се екстрахират два пъти със 70% етанол (с 2 часа кипене) и след това екстрактът се концентрира при понижено налягане. Отварата се филтрира, лиофилизира и съхранява при 4°С. Добивът на сух екстракт от сурови изходни материали е 48.13% (w/w).
2.2. Количествен анализ с високоефективна течна хроматография (HPLC).
Хроматографският анализ се извършва с HPLC система (Waters Co., Milford, MA, USA) и фотодиоден детектор. За HPLC анализ на SDE, прим.O-стандартът на глюкозилцимифугин е закупен от Корейския институт за насърчаване на традиционната медицина (Gyeongsan, Корея) исек-О-глюкозилхамаудол и 4'-O-β-D-глюкозил-5-O-methylvisamminol бяха изолирани в нашата лаборатория и идентифицирани чрез спектрални анализи, предимно чрез NMR и MS.
SDE проби (0.1 mg) се разтварят в 70% етанол (10 mL). Хроматографското разделяне се извършва с колона XSelect HSS T3 C18 (4,6 × 250 mm, 5μm, Waters Co., Милфорд, Масачузетс, САЩ). Подвижната фаза се състои от ацетонитрил (А) и 0.1% оцетна киселина във вода (В) при скорост на потока 1.0 mL/min. Използвана е програма с многоетапен градиент, както следва: 5% A (0 min), 5–20% A (0–10 min), 20% A (10–23 min) и 20–65% A (23–40 min) ). Дължината на вълната на откриване беше сканирана при 210–400 nm и записана при 254 nm. Инжекционният обем беше 10,0μL. Стандартни разтвори за определяне на три хромона се приготвят при крайна концентрация от 7,781 mg/mL (първ.O-глюкозилцимифугин), 31,125 mg/mL (4′-O-β-D-глюкозил-5-O-метилвизаминол) и 31,125 mg/mL (сек-О-глюкозилхамаудол) в метанол и се държи при 4°С.
2.3. Оценка на противовъзпалителната активностИн витро
2.3.1. Клетъчна култура и третиране на проби
RAW 264.7 клетки бяха получени от Американската колекция от типови култури (ATCC, Manassas, VA, USA) и отгледани в DMEM среда, съдържаща 1% антибиотици и 5.5% FBS. Клетките се инкубират във влажна атмосфера с 5% СО2 при 37°С. За да се стимулират клетките, средата беше заменена със свежа DMEM среда и липополизахарид (LPS, Sigma-Aldrich Chemical Co., St. Louis, MO, USA) при 1μg/mL се добавя в присъствието или отсъствието на SDE (200 или 400μg/mL) за още 24 часа.
2.3.2. Определяне на азотен оксид (NO), простагландин Е2 (PGE2), фактор на туморна некроза-α(TNF-α) и производство на интерлевкин-6 (IL-6).
Клетките се третират с SDE и се стимулират с LPS в продължение на 24 часа. Производството на NO се анализира чрез измерване на нитрит с помощта на реактива на Griess съгласно предишно проучване [12]. Секреция на възпалителните цитокини PGE2, TNF-αи IL-6 се определя с помощта на комплект ELISA (R&D системи) съгласно инструкциите на производителя. Ефектите на SDE върху производството на NO и цитокини се определят при 540 nm или 450 nm с помощта на Wallac EnVision™четец на микроплаки (PerkinElmer).
2.4. Оценка на антиостеоартритната активностIn Vivo
2.4.1. животни
Мъжки плъхове Sprague-Dawley (на възраст 7 седмици) бяха закупени от Samtako Inc. (Осан, Корея) и настанени при контролирани условия с 12-часов цикъл светлина/тъмнина при°C и% влажност. На плъховете е осигурена лабораторна диета и водаad libitum. Всички експериментални процедури бяха извършени в съответствие с насоките на Националния институт по здравеопазване (NIH) и одобрени от Комитета за грижа и използване на животните на университета Daejeon (Daejeon, Република Корея).
2.4.2. Индуциране на ОА с MIA при плъхове
Животните бяха рандомизирани и разпределени в групи за лечение преди началото на изследването (на група). MIA разтвор (3 mg/50μL 0,9% физиологичен разтвор) се инжектира директно във вътреставното пространство на дясното коляно под анестезия, предизвикана със смес от кетамин и ксилазин. Плъховете бяха разделени на случаен принцип в четири групи: (1) група с физиологичен разтвор без инжекция с MIA, (2) група с MIA с инжекция с MIA, (3) група, лекувана със SDE (200 mg/kg) с инжекция с MIA и (4 ) групата, лекувана с индометацин (IM-) (2 mg/kg) с MIA инжекция. На плъховете са прилагани орално SDE и IM 1 седмица преди инжектирането на MIA в продължение на 4 седмици. Дозировката на SDE и IM, използвани в това проучване, се основава на тези, използвани в предишни проучвания [10,13,14].
2.4.3. Измервания на разпределението на тежестта на задната лапа
След индукция на ОА, първоначалният баланс в способността за носене на тежест на задните лапи беше нарушен. Използван е тестер за неспособност (Linton instrumentation, Norfolk, UK) за оценка на промените в толеранса за носене на тегло. Плъховете бяха внимателно поставени в измервателната камера. Носещата сила, упражнявана от задния крайник, беше осреднена за период от 3 s. Коефициентът на разпределение на теглото се изчислява по следното уравнение: [тегло на десния заден крайник/(тегло на десния заден крайник + тегло на левия заден крайник)] × 100 [15].
2.4.4. Измервания на серумните нива на цитокини
Кръвните проби се центрофугират при 1500 g за 10 минути при 4°C; след това серумът се събира и съхранява при -70°C до употреба. Нивата на IL-1β, IL-6, TNF-αи PGE2 в серума бяха измерени с помощта на комплекти ELISA от R&D Systems (Минеаполис, MN, САЩ) съгласно инструкциите на производителя.
2.4.5. Количествен RT-PCR анализ в реално време
Общата РНК се екстрахира от тъкан на колянна става с помощта на TRI reagent® (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA), обратно транскрибирана в cDNA и PCR-амплифицирана с помощта на TM One Step RT PCR комплект със SYBR зелено (Applied Biosystems , Гранд Айлънд, Ню Йорк, САЩ). Количественият PCR в реално време се извършва с помощта на системата Applied Biosystems 7500 Real-Time PCR (Applied Biosystems, Grand Island, NY, USA). Праймерните последователности и пробата-последователност са показани в Таблица1. Аликвотни части от пробни сДНК и равно количество GAPDH сДНК бяха амплифицирани с TaqMan® Universal PCR основна смес, съдържаща ДНК полимераза съгласно инструкциите на производителя (Applied Biosystems, Фостър, Калифорния, САЩ). Условията на PCR бяха 2 минути при 50°С, 10 минути при 94°С, 15 секунди при 95°С и 1 минута при 60°С за 40 цикъла. Концентрацията на целевия ген се определя с помощта на сравнителния Ct (номер на праговия цикъл в пресечната точка между диаграмата на амплификация и прага) метод, съгласно инструкциите на производителя.
FOB Цена:US $0,5 - 9 999 / Брой
Минимално количество за поръчка:100 бр./бр
Възможност за доставка:10000 бройки/бройки на месец
Остеоартритът (ОА) е най-често срещаното мускулно-скелетно заболяване и най-честата дегенеративна ставна болест при възрастните хора.1]. ОА е състояние, причинено отчасти от нараняване, загуба на хрущялна структура и функция и дисрегулация на провъзпалителни и противовъзпалителни пътища [2,3]. Засяга предимно ставния хрущял и субхондралната кост на синовиалните стави и води до увреждане на ставите, което води до болка при носене на тежести, включително ходене и стоене [4].
Няма лечение за ОА, тъй като е много трудно да се възстанови хрущялът, след като е разрушен [5]. Целите на лечението са облекчаване на болката, поддържане или подобряване на подвижността на ставите, увеличаване на здравината на ставите и минимизиране на инвалидизиращите ефекти на заболяването. Фармакологичното лечение на ОА има за цел да намали болката, за да подобри ставната функция и качеството на живот на пациента. Въпреки че разрушаването на хрущяла е основното събитие при ОА, разграждането на колагена е основният инцидент, който определя необратимото прогресиране на ОА във връзка с възпаление [6,7]. Очаква се лечения с противовъзпалителна и хондропротективна активност да облекчат болката и да поддържат целостта на матрицата при пациенти с ОА.
Следователно намаляването на възпалението вероятно ще бъде от полза при управлението на ОА. Скорошни проучвания предполагат защитна роля на билковите ресурси при прогресирането на ОА, по отношение на смекчаване на възпалението на хондроцитите и по-нататъшно разрушаване на хрущяла, чрез способността им да взаимодействат със свързаните със ставите тъкани, което води до смекчаване на ставната болка [8].
Коренът наSaposhnikovia divaricataSchischkin (Umbelliferae) се използва широко в традиционната медицина за лечение на главоболие, болка, възпаление и артрит в Корея и Китай [9,10]. Разнообразните фармакологични ефекти наSaposhnikovia divaricata(SD) включват също противовъзпалителни, аналгетични, антипиретични и антиартритни свойства [9,11]. Скорошно проучване показа, че екстрактът от SD хромон притежава потенциални антиревматоидни артритни ефекти при миши модел на колаген-индуциран артрит [10]; въпреки това са проведени малко проучвания в подкрепа на противовъзпалителната и антиартритната активност наSaposhnikovia divaricataекстракт (SDE).
Ето защо, настоящото проучване изследва противовъзпалителните и антиостеоартритните активности на 70% етанолов екстракт от SD. Първо, беше оценен противовъзпалителният ефект на SDEин витров LPS-индуцирани RAW 264.7 клетки. След това антиостеоартритният ефект на SDE беше измерен чрез оценка на разпределението на теглото, разграждането на ставния хрущял и възпалителните реакции в плъх модел на индуцирана от мононатриев йодоацетат (MIA-) ОА.